សូមអរគុណសម្រាប់ការចូលមើលគេហទំព័រ nature.com។ កំណែកម្មវិធីរុករកដែលអ្នកកំពុងប្រើមានការគាំទ្រ CSS មានកំណត់។ ដើម្បីទទួលបានបទពិសោធន៍ល្អបំផុត យើងសូមណែនាំឱ្យប្រើកំណែកម្មវិធីរុករកចុងក្រោយបំផុត (ឬបិទរបៀបឆបគ្នានៅក្នុង Internet Explorer)។ លើសពីនេះ ដើម្បីធានាបាននូវការគាំទ្រជាបន្តបន្ទាប់ គេហទំព័រនេះនឹងមិនរួមបញ្ចូលរចនាប័ទ្ម ឬ JavaScript ទេ។
អ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីត (H2S) មានឥទ្ធិពលសរីរវិទ្យា និងរោគសាស្ត្រច្រើនយ៉ាងលើរាងកាយមនុស្ស។ សូដ្យូមអ៊ីដ្រូស៊ុលហ្វីត (NaHS) ត្រូវបានគេប្រើប្រាស់យ៉ាងទូលំទូលាយជាឧបករណ៍ឱសថសាស្ត្រដើម្បីវាយតម្លៃផលប៉ះពាល់នៃ H2S នៅក្នុងការពិសោធន៍ជីវសាស្ត្រ។ ទោះបីជាការបាត់បង់ H2S ពីដំណោះស្រាយ NaHS ចំណាយពេលត្រឹមតែប៉ុន្មាននាទីប៉ុណ្ណោះក៏ដោយ ដំណោះស្រាយ NaHS ត្រូវបានគេប្រើជាសមាសធាតុផ្តល់ជំនួយសម្រាប់ H2S ក្នុងទឹកផឹកក្នុងការសិក្សាលើសត្វមួយចំនួន។ ការសិក្សានេះបានស៊ើបអង្កេតថាតើទឹកផឹកដែលមានកំហាប់ NaHS 30 μM ដែលរៀបចំក្នុងដបកណ្តុរ/កណ្ដុរអាចរក្សាស្ថេរភាពយ៉ាងហោចណាស់ 12-24 ម៉ោង ដូចដែលបានណែនាំដោយអ្នកនិពន្ធមួយចំនួន។ រៀបចំដំណោះស្រាយ NaHS (30 μM) ក្នុងទឹកផឹក ហើយចាក់វាភ្លាមៗចូលទៅក្នុងដបទឹកកណ្តុរ/កណ្ដុរ។ គំរូត្រូវបានប្រមូលពីចុង និងខាងក្នុងដបទឹកនៅសីតុណ្ហភាព 0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 12 និង 24 ម៉ោង ដើម្បីវាស់មាតិកាស៊ុលហ្វីតដោយប្រើវិធីសាស្ត្រមេទីលីនខៀវ។ លើសពីនេះ កណ្តុរឈ្មោល និងញីត្រូវបានចាក់ NaHS (30 μM) រយៈពេលពីរសប្តាហ៍ ហើយកំហាប់ស៊ុលហ្វីតសេរ៉ូមត្រូវបានវាស់រៀងរាល់ពីរថ្ងៃម្តងក្នុងអំឡុងសប្តាហ៍ដំបូង និងនៅចុងបញ្ចប់នៃសប្តាហ៍ទីពីរ។ ដំណោះស្រាយ NaHS នៅក្នុងគំរូដែលទទួលបានពីចុងដបទឹកគឺមិនស្ថិតស្ថេរទេ។ វាបានថយចុះ 72% និង 75% បន្ទាប់ពី 12 និង 24 ម៉ោងរៀងៗខ្លួន។ នៅក្នុងគំរូដែលទទួលបានពីខាងក្នុងដបទឹក ការថយចុះនៃ NaHS មិនគួរឱ្យកត់សម្គាល់ក្នុងរយៈពេល 2 ម៉ោងទេ។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ វាបានថយចុះ 47% និង 72% បន្ទាប់ពី 12 និង 24 ម៉ោងរៀងៗខ្លួន។ ការចាក់ NaHS មិនបានប៉ះពាល់ដល់កម្រិតស៊ុលហ្វីតសេរ៉ូមរបស់កណ្តុរឈ្មោល និងញីទេ។ សរុបមក ដំណោះស្រាយ NaHS ដែលរៀបចំពីទឹកផឹកមិនគួរប្រើសម្រាប់ការបរិច្ចាគ H2S ទេ ព្រោះដំណោះស្រាយមិនស្ថិតស្ថេរ។ ផ្លូវនៃការគ្រប់គ្រងនេះនឹងធ្វើឱ្យសត្វប្រឈមនឹងបរិមាណ NaHS មិនទៀងទាត់ និងតិចជាងការរំពឹងទុក។
អ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីត (H2S) ត្រូវបានគេប្រើជាជាតិពុលតាំងពីឆ្នាំ 1700។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ តួនាទីដែលអាចកើតមានរបស់វាជាម៉ូលេគុលជីវសញ្ញាខាងក្នុងត្រូវបានពិពណ៌នាដោយលោក Abe និងលោក Kimura ក្នុងឆ្នាំ 1996។ ក្នុងរយៈពេលបីទសវត្សរ៍កន្លងមកនេះ មុខងារជាច្រើនរបស់ H2S នៅក្នុងប្រព័ន្ធមនុស្សផ្សេងៗត្រូវបានបញ្ជាក់ឱ្យច្បាស់ ដែលនាំឱ្យមានការដឹងថាម៉ូលេគុលអ្នកបរិច្ចាគ H2S អាចមានកម្មវិធីព្យាបាលក្នុងការព្យាបាល ឬការគ្រប់គ្រងជំងឺមួយចំនួន។ សូមមើល Chirino et al. សម្រាប់ការពិនិត្យឡើងវិញថ្មីៗនេះ។
សូដ្យូម អ៊ីដ្រូស៊ុលហ្វីត (NaHS) ត្រូវបានគេប្រើប្រាស់យ៉ាងទូលំទូលាយជាឧបករណ៍ឱសថសាស្ត្រ ដើម្បីវាយតម្លៃផលប៉ះពាល់នៃ H2S នៅក្នុងការដាំដុះកោសិកា និងការសិក្សាលើសត្វជាច្រើន5,6,7,8។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ NaHS មិនមែនជាអ្នកផ្តល់ H2S ដ៏ល្អនោះទេ ព្រោះវាត្រូវបានបំប្លែងយ៉ាងឆាប់រហ័សទៅជា H2S/HS- ក្នុងដំណោះស្រាយ ងាយនឹងបំពុលដោយប៉ូលីស្យូម ហើយងាយនឹងកត់សុី និងហួត4,9។ នៅក្នុងការពិសោធន៍ជីវសាស្រ្តជាច្រើន NaHS ត្រូវបានរំលាយក្នុងទឹក ដែលបណ្តាលឱ្យមានការហួតអកម្ម និងការបាត់បង់ H2S10,11,12 អុកស៊ីតកម្មដោយឯកឯងនៃ H2S11,12,13 និងការបំបែកដោយពន្លឺ14។ ស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងដំណោះស្រាយដើមត្រូវបានបាត់បង់យ៉ាងឆាប់រហ័ស ដោយសារតែការហួត H2S11។ នៅក្នុងធុងបើកចំហ អាយុកាលពាក់កណ្តាល (t1/2) នៃ H2S គឺប្រហែល 5 នាទី ហើយកំហាប់របស់វាថយចុះប្រហែល 13% ក្នុងមួយនាទី10។ ទោះបីជាការបាត់បង់អ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតពីដំណោះស្រាយ NaHS ចំណាយពេលត្រឹមតែប៉ុន្មាននាទីប៉ុណ្ណោះក៏ដោយ ការសិក្សាលើសត្វមួយចំនួនបានប្រើដំណោះស្រាយ NaHS ជាប្រភពនៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតក្នុងទឹកផឹករយៈពេល 1-21 សប្តាហ៍ ដោយជំនួសដំណោះស្រាយដែលមានផ្ទុក NaHS រៀងរាល់ 12-24 ម៉ោងម្តង។15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26 ការអនុវត្តនេះមិនស្របនឹងគោលការណ៍នៃការស្រាវជ្រាវវិទ្យាសាស្ត្រទេ ព្រោះកម្រិតថ្នាំគួរតែផ្អែកលើការប្រើប្រាស់របស់វានៅក្នុងប្រភេទសត្វដទៃទៀត ជាពិសេសមនុស្ស។27
ការស្រាវជ្រាវមុនព្យាបាលក្នុងជីវវេជ្ជសាស្ត្រមានគោលបំណងបង្កើនគុណភាពនៃការថែទាំអ្នកជំងឺ ឬលទ្ធផលនៃការព្យាបាល។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ លទ្ធផលនៃការសិក្សាលើសត្វភាគច្រើនមិនទាន់ត្រូវបានបកប្រែទៅមនុស្សនៅឡើយទេ28,29,30។ មូលហេតុមួយសម្រាប់ការបរាជ័យនៃការបកប្រែនេះគឺកង្វះការយកចិត្តទុកដាក់ចំពោះគុណភាពវិធីសាស្ត្រនៃការសិក្សាលើសត្វ30។ ដូច្នេះ គោលបំណងនៃការសិក្សានេះគឺដើម្បីស៊ើបអង្កេតថាតើដំណោះស្រាយ NaHS 30 μM ដែលរៀបចំក្នុងដបទឹកកណ្តុរ/កណ្ដុរអាចរក្សាស្ថេរភាពក្នុងទឹកផឹករយៈពេល 12-24 ម៉ោងដូចដែលបានអះអាង ឬណែនាំនៅក្នុងការសិក្សាមួយចំនួនឬអត់។
ការពិសោធន៍ទាំងអស់នៅក្នុងការសិក្សានេះត្រូវបានធ្វើឡើងស្របតាមគោលការណ៍ណែនាំដែលបានបោះពុម្ពផ្សាយសម្រាប់ការថែទាំ និងការប្រើប្រាស់សត្វមន្ទីរពិសោធន៍នៅក្នុងប្រទេសអ៊ីរ៉ង់31។ របាយការណ៍ពិសោធន៍ទាំងអស់នៅក្នុងការសិក្សានេះក៏បានអនុវត្តតាមគោលការណ៍ណែនាំរបស់ ARRIVE32។ គណៈកម្មាធិការសីលធម៌នៃវិទ្យាស្ថានវិទ្យាសាស្ត្រអង់ដូគ្រីន សាកលវិទ្យាល័យវិទ្យាសាស្ត្រវេជ្ជសាស្ត្រ Shahid Beheshti បានអនុម័តនីតិវិធីពិសោធន៍ទាំងអស់នៅក្នុងការសិក្សានេះ។
ស័ង្កសីអាសេតាតឌីអ៊ីដ្រាត (CAS: 5970-45-6) និង​ក្លរួ​ហ្វេរីក​អាន់ហៃដ្រូស (CAS: 7705-08-0) ត្រូវបានទិញពី Biochem, Chemopahrama (Cosne-sur-Loire, ប្រទេសបារាំង)។ សូដ្យូម​អ៊ីដ្រូស៊ុលហ្វីត​អ៊ីដ្រាត (CAS: 207683-19-0) និង N,N-dimethyl-p-phenylenediamine (DMPD) (CAS: 535-47-0) ត្រូវបានទិញពី Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, សហរដ្ឋអាមេរិក)។ អ៊ីសូហ្វ្លូរ៉ាន ត្រូវបានទិញពី Piramal (Bethlehem, PA, សហរដ្ឋអាមេរិក)។ អាស៊ីត​អ៊ីដ្រូក្លរីក (HCl) ត្រូវបានទិញពី Merck (Darmstadt, ប្រទេសអាល្លឺម៉ង់)។
រៀបចំដំណោះស្រាយ NaHS (30 μM) ក្នុងទឹកផឹក ហើយចាក់វាភ្លាមៗចូលទៅក្នុងដបទឹកកណ្តុរ/កណ្ដុរ។ កំហាប់នេះត្រូវបានជ្រើសរើសដោយផ្អែកលើការបោះពុម្ពផ្សាយជាច្រើនដោយប្រើ NaHS ជាប្រភពនៃ H2S; សូមមើលផ្នែកពិភាក្សា។ NaHS គឺជាម៉ូលេគុលដែលមានជាតិទឹកដែលអាចមានជាតិទឹកក្នុងបរិមាណខុសៗគ្នា (ឧ. NaHS•xH2O); យោងតាមក្រុមហ៊ុនផលិត ភាគរយនៃ NaHS ដែលប្រើក្នុងការសិក្សារបស់យើងគឺ 70.7% (ឧ. NaHS•1.3 H2O) ហើយយើងបានគិតគូរពីតម្លៃនេះនៅក្នុងការគណនារបស់យើង ដែលយើងបានប្រើទម្ងន់ម៉ូលេគុល 56.06 ក្រាម/ម៉ូលេគុល ដែលជាទម្ងន់ម៉ូលេគុលនៃ NaHS ដែលគ្មានជាតិទឹក។ ទឹកដែលមានជាតិទឹក (ហៅម្យ៉ាងទៀតថាទឹកនៃគ្រីស្តាល់) គឺជាម៉ូលេគុលទឹកដែលបង្កើតជារចនាសម្ព័ន្ធគ្រីស្តាល់33។ អ៊ីដ្រាតមានលក្ខណៈសម្បត្តិរូបវន្ត និងទែរម៉ូឌីណាមិកខុសគ្នាបើប្រៀបធៀបទៅនឹងអាន់អ៊ីដ្រាត34។
មុនពេលបន្ថែម NaHS ទៅក្នុងទឹកផឹក សូមវាស់ pH និងសីតុណ្ហភាពនៃសារធាតុរំលាយ។ ចាក់ដំណោះស្រាយ NaHS ភ្លាមៗចូលទៅក្នុងដបទឹកកណ្តុរ/កណ្ដុរនៅក្នុងទ្រុងសត្វ។ គំរូត្រូវបានប្រមូលពីចុង និងពីខាងក្នុងដបទឹកនៅ 0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 12, និង 24 ម៉ោង ដើម្បីវាស់មាតិកាស៊ុលហ្វីត។ ការវាស់ស៊ុលហ្វីតត្រូវបានធ្វើឡើងភ្លាមៗបន្ទាប់ពីការយកគំរូនីមួយៗ។ យើងទទួលបានគំរូពីចុងបំពង់ ពីព្រោះការសិក្សាមួយចំនួនបានបង្ហាញថាទំហំរន្ធតូចនៃបំពង់ទឹកអាចកាត់បន្ថយការហួត H2S15,19។ បញ្ហានេះហាក់ដូចជាអនុវត្តចំពោះដំណោះស្រាយនៅក្នុងដបផងដែរ។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ នេះមិនមែនជាករណីសម្រាប់ដំណោះស្រាយនៅកដបទឹកនោះទេ ដែលមានអត្រាហួតខ្ពស់ជាង និងកំពុងអុកស៊ីតកម្មដោយស្វ័យប្រវត្តិ។ តាមពិត សត្វបានផឹកទឹកនេះមុន។
ការសិក្សានេះប្រើប្រាស់កណ្តុរ Wistar ឈ្មោល និងញី។ កណ្តុរទាំងនេះត្រូវបានដាក់ក្នុងទ្រុង polypropylene (កណ្តុរ 2-3 ក្បាលក្នុងមួយទ្រុង) ក្រោមលក្ខខណ្ឌស្តង់ដារ (សីតុណ្ហភាព 21-26°C សំណើម 32-40%) ជាមួយនឹងពន្លឺរយៈពេល 12 ម៉ោង (ម៉ោង 7 ព្រឹក ដល់ 7 ល្ងាច) និងភាពងងឹតរយៈពេល 12 ម៉ោង (ម៉ោង 7 ល្ងាច ដល់ 7 ព្រឹក)។ កណ្តុរទាំងនេះអាចប្រើប្រាស់ទឹកម៉ាស៊ីនបានដោយសេរី និងត្រូវបានផ្តល់ចំណីស្តង់ដារ (ក្រុមហ៊ុន Khorak Dam Pars ទីក្រុងតេអេរ៉ង់ ប្រទេសអ៊ីរ៉ង់)។ កណ្តុរ Wistar ញីដែលមានអាយុស្របគ្នា (6 ខែ) (n=10 ទម្ងន់ខ្លួន៖ 190-230 ក្រាម) និងឈ្មោល (n=10 ទម្ងន់ខ្លួន៖ 320-370 ក្រាម) ត្រូវបានបែងចែកដោយចៃដន្យទៅជាក្រុមត្រួតពិនិត្យ និងក្រុមដែលបានព្យាបាលដោយ NaHS (30 μM) (n=5 ក្នុងមួយក្រុម)។ ដើម្បីកំណត់ទំហំគំរូ យើងបានប្រើវិធីសាស្រ្ត KISS (Keep It Simple, Stupid) ដែលរួមបញ្ចូលគ្នានូវបទពិសោធន៍ពីមុន និងការវិភាគថាមពល35។ ដំបូងយើងបានធ្វើការសិក្សាសាកល្បងលើសត្វកណ្តុរចំនួន 3 ក្បាល ហើយបានកំណត់កម្រិតស៊ុលហ្វីតសរុបក្នុងសេរ៉ូមជាមធ្យម និងគម្លាតស្តង់ដារ (8.1 ± 0.81 μM)។ បន្ទាប់មក ដោយពិចារណាលើថាមពល 80% និងសន្មតថាកម្រិតសារៈសំខាន់ទ្វេភាគី 5% យើងបានកំណត់ទំហំគំរូបឋម (n = 5 ដោយផ្អែកលើអក្សរសិល្ប៍មុនៗ) ដែលត្រូវគ្នានឹងទំហំឥទ្ធិពលស្តង់ដារ 2.02 ជាមួយនឹងតម្លៃដែលបានកំណត់ជាមុនដែលបានស្នើឡើងដោយ Festing សម្រាប់ការគណនាទំហំគំរូនៃសត្វពិសោធន៍35។ បន្ទាប់ពីគុណតម្លៃនេះដោយ SD (2.02 × 0.81) ទំហំឥទ្ធិពលដែលអាចរកឃើញបានដែលបានព្យាករណ៍ (1.6 μM) គឺ 20% ដែលអាចទទួលយកបាន។ នេះមានន័យថា n = 5/ក្រុមគឺគ្រប់គ្រាន់ដើម្បីរកឃើញការផ្លាស់ប្តូរមធ្យម 20% រវាងក្រុម។ សត្វកណ្តុរត្រូវបានបែងចែកដោយចៃដន្យទៅជាក្រុមត្រួតពិនិត្យ និងក្រុមដែលបានព្យាបាលដោយ NaSH ដោយប្រើមុខងារចៃដន្យនៃកម្មវិធី Excel 36 (រូបភាពបន្ថែមទី 1)។ ការបិទបាំងត្រូវបានអនុវត្តនៅកម្រិតលទ្ធផល ហើយអ្នកស៊ើបអង្កេតដែលធ្វើការវាស់វែងជីវគីមីមិនបានដឹងអំពីការចាត់តាំងក្រុមនោះទេ។
ក្រុម NaHS នៃភេទទាំងពីរត្រូវបានព្យាបាលដោយដំណោះស្រាយ NaHS 30 μM ដែលរៀបចំក្នុងទឹកផឹករយៈពេល 2 សប្តាហ៍។ ដំណោះស្រាយស្រស់ត្រូវបានផ្គត់ផ្គង់រៀងរាល់ 24 ម៉ោងម្តង ក្នុងអំឡុងពេលនោះទម្ងន់រាងកាយត្រូវបានវាស់។ គំរូឈាមត្រូវបានប្រមូលពីចុងកន្ទុយរបស់សត្វកណ្តុរទាំងអស់ក្រោមការប្រើថ្នាំសន្លប់ isoflurane រៀងរាល់ពីរថ្ងៃម្តងនៅចុងបញ្ចប់នៃសប្តាហ៍ទីមួយ និងទីពីរ។ គំរូឈាមត្រូវបានបង្វិលក្នុងកម្លាំង 3000 ក្រាមរយៈពេល 10 នាទី សេរ៉ូមត្រូវបានបំបែក និងរក្សាទុកនៅសីតុណ្ហភាព -80°C សម្រាប់ការវាស់វែងជាបន្តបន្ទាប់នៃអ៊ុយរ៉េសេរ៉ូម ក្រេទីនីន (Cr) និងស៊ុលហ្វីតសរុប។ អ៊ុយរ៉េសេរ៉ូមត្រូវបានកំណត់ដោយវិធីសាស្ត្រអង់ស៊ីមអ៊ុយរ៉េស ហើយក្រេទីនីនសេរ៉ូមត្រូវបានកំណត់ដោយវិធីសាស្ត្រ Jaffe តាមពន្លឺដោយប្រើឧបករណ៍ដែលមានលក់នៅលើទីផ្សារ (ក្រុមហ៊ុន Man, ទីក្រុងតេអេរ៉ង់, អ៊ីរ៉ង់) និងម៉ាស៊ីនវិភាគស្វ័យប្រវត្តិ (Selectra E, លេខស៊េរី 0-2124, ប្រទេសហូឡង់)។ មេគុណបំរែបំរួលអន្តរ និងអន្តរការវិភាគសម្រាប់អ៊ុយរ៉េ និង Cr គឺតិចជាង 2.5%។
វិធីសាស្ត្រមេទីលីនខៀវ (MB) ត្រូវបានប្រើដើម្បីវាស់ស៊ុលហ្វីតសរុបនៅក្នុងទឹកផឹក និងសេរ៉ូមដែលមានផ្ទុក NaHS; MB គឺជាវិធីសាស្ត្រដែលប្រើជាទូទៅបំផុតសម្រាប់វាស់ស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងដំណោះស្រាយភាគច្រើន និងគំរូជីវសាស្រ្ត11,37។ វិធីសាស្ត្រ MB អាចត្រូវបានប្រើដើម្បីប៉ាន់ប្រមាណអាងស៊ុលហ្វីតសរុប38 និងវាស់ស៊ុលហ្វីតអសរីរាង្គក្នុងទម្រង់ជា H2S, HS- និង S2 នៅក្នុងដំណាក់កាលទឹក39។ នៅក្នុងវិធីសាស្ត្រនេះ ស្ពាន់ធ័រត្រូវបានធ្លាក់ជាស័ង្កសីស៊ុលហ្វីត (ZnS) នៅក្នុងវត្តមាននៃស័ង្កសីអាសេតាត11,38។ ការធ្លាក់ស័ង្កសីអាសេតាតគឺជាវិធីសាស្ត្រដែលប្រើយ៉ាងទូលំទូលាយបំផុតសម្រាប់បំបែកស៊ុលហ្វីតចេញពីក្រូម៉ូសូមផ្សេងទៀត11។ ZnS ត្រូវបានរំលាយឡើងវិញដោយប្រើ HCl11 ក្រោមលក្ខខណ្ឌអាស៊ីតខ្លាំង។ ស៊ុលហ្វីតមានប្រតិកម្មជាមួយ DMPD ក្នុងសមាមាត្រស្តូគីយ៉ូម៉ែត្រិច 1:2 នៅក្នុងប្រតិកម្មដែលត្រូវបានជំរុញដោយហ្វេរីកក្លរួ (Fe3+ ដើរតួជាសារធាតុអុកស៊ីតកម្ម) ដើម្បីបង្កើតជាថ្នាំជ្រលក់ MB ដែលត្រូវបានរកឃើញដោយវិសាលគមនៅ 670 nm40,41។ ដែនកំណត់នៃការរកឃើញនៃវិធីសាស្ត្រ MB គឺប្រហែល 1 μM11។
នៅក្នុងការសិក្សានេះ 100 μL នៃសំណាកនីមួយៗ (ដំណោះស្រាយ ឬសេរ៉ូម) ត្រូវបានបន្ថែមទៅក្នុងបំពង់មួយ។ បន្ទាប់មក 200 μL នៃស័ង្កសីអាសេតាត (1% w/v ក្នុងទឹកចម្រោះ) 100 μL នៃ DMPD (20 mM ក្នុង 7.2 M HCl) និង 133 μL នៃ FeCl3 (30 mM ក្នុង 1.2 M HCl) ត្រូវបានបន្ថែម។ ល្បាយនេះត្រូវបានភ្ញាស់នៅសីតុណ្ហភាព 37°C ក្នុងទីងងឹតរយៈពេល 30 នាទី។ ដំណោះស្រាយត្រូវបានបង្វិលក្នុងកម្លាំង 10,000 g រយៈពេល 10 នាទី ហើយការស្រូបយកសារធាតុរាវខាងលើត្រូវបានអាននៅ 670 nm ដោយប្រើឧបករណ៍អានមីក្រូផ្លាត (BioTek, MQX2000R2, Winooski, VT, USA)។ កំហាប់ស៊ុលហ្វីតត្រូវបានកំណត់ដោយប្រើខ្សែកោងក្រិតតាមខ្នាត NaHS (0–100 μM) ក្នុង ddH2O (រូបភាពបន្ថែម 2)។ ដំណោះស្រាយទាំងអស់ដែលប្រើសម្រាប់ការវាស់វែងត្រូវបានរៀបចំថ្មីៗ។ មេគុណបំរែបំរួលអន្តរការវិភាគ និងអន្តរការវិភាគសម្រាប់ការវាស់វែងស៊ុលហ្វីតគឺ 2.8% និង 3.4% រៀងគ្នា។ យើងក៏បានកំណត់ស៊ុលហ្វីតសរុបដែលបានរកឃើញពីសំណាកទឹកផឹក និងសេរ៉ូមដែលមានផ្ទុកសូដ្យូមធីអូស៊ុលហ្វាតដោយប្រើវិធីសាស្ត្រសំណាកដែលបានបន្ថែមសារធាតុចិញ្ចឹម42។ ការរកឃើញសម្រាប់សំណាកទឹកផឹក និងសេរ៉ូមដែលមានផ្ទុកសូដ្យូមធីអូស៊ុលហ្វាតគឺ 91 ± 1.1% (n = 6) និង 93 ± 2.4% (n = 6) រៀងគ្នា។
ការវិភាគស្ថិតិត្រូវបានអនុវត្តដោយប្រើកម្មវិធី GraphPad Prism កំណែ 8.0.2 សម្រាប់ Windows (កម្មវិធី GraphPad, San Diego, CA, USA, www.graphpad.com)។ ការធ្វើតេស្ត t-test ផ្គូផ្គងត្រូវបានប្រើដើម្បីប្រៀបធៀបសីតុណ្ហភាព និង pH នៃទឹកផឹកមុន និងក្រោយពេលបន្ថែម NaHS។ ការបាត់បង់ H2S នៅក្នុងដំណោះស្រាយដែលមាន NaHS ត្រូវបានគណនាជាភាគរយថយចុះពីការស្រូបយកមូលដ្ឋាន ហើយដើម្បីវាយតម្លៃថាតើការបាត់បង់មានសារៈសំខាន់ខាងស្ថិតិឬអត់ យើងបានអនុវត្ត ANOVA វិធានការម្តងហើយម្តងទៀតមួយផ្លូវ បន្ទាប់មកដោយការធ្វើតេស្តប្រៀបធៀបច្រើនរបស់ Dunnett។ ទម្ងន់ខ្លួន អ៊ុយរ៉េសេរ៉ូម creatinine សេរ៉ូម និងស៊ុលហ្វីតសេរ៉ូមសរុបតាមពេលវេលាត្រូវបានប្រៀបធៀបរវាងកណ្តុរត្រួតពិនិត្យ និងកណ្តុរដែលបានព្យាបាលដោយ NaHS នៃភេទផ្សេងៗគ្នាដោយប្រើ ANOVA លាយពីរផ្លូវ (រវាង-ខាងក្នុង) បន្ទាប់មកដោយការធ្វើតេស្ត Bonferroni post hoc។ តម្លៃ P ពីរកន្ទុយ < 0.05 ត្រូវបានចាត់ទុកថាមានសារៈសំខាន់ខាងស្ថិតិ។
pH នៃទឹកផឹកគឺ 7.60 ± 0.01 មុនពេលបន្ថែម NaHS និង 7.71 ± 0.03 បន្ទាប់ពីបន្ថែម NaHS (n = 13, p = 0.0029)។ សីតុណ្ហភាពនៃទឹកផឹកគឺ 26.5 ± 0.2 ហើយថយចុះមកត្រឹម 26.2 ± 0.2 បន្ទាប់ពីបន្ថែម NaHS (n = 13, p = 0.0128)។ រៀបចំដំណោះស្រាយ NaHS កំហាប់ 30 μM ក្នុងទឹកផឹក ហើយរក្សាទុកវាក្នុងដបទឹក។ ដំណោះស្រាយ NaHS មិនស្ថិតស្ថេរទេ ហើយកំហាប់របស់វាថយចុះតាមពេលវេលា។ នៅពេលយកសំណាកពីកញ្ចឹងកដបទឹក ការថយចុះគួរឱ្យកត់សម្គាល់ (68.0%) ត្រូវបានគេសង្កេតឃើញក្នុងរយៈពេលមួយម៉ោងដំបូង ហើយមាតិកា NaHS នៅក្នុងដំណោះស្រាយបានថយចុះ 72% និង 75% បន្ទាប់ពី 12 និង 24 ម៉ោងរៀងៗខ្លួន។ នៅក្នុងសំណាកដែលទទួលបានពីដបទឹក ការថយចុះនៃ NaHS មិនគួរឱ្យកត់សម្គាល់រហូតដល់ 2 ម៉ោងទេ ប៉ុន្តែបន្ទាប់ពី 12 និង 24 ម៉ោងវាបានថយចុះ 47% និង 72% រៀងៗខ្លួន។ ទិន្នន័យទាំងនេះបង្ហាញថាភាគរយនៃ NaHS នៅក្នុងដំណោះស្រាយ 30 μM ដែលរៀបចំក្នុងទឹកស្អាតបានថយចុះមកត្រឹមប្រហែលមួយភាគបួននៃតម្លៃដំបូងបន្ទាប់ពី 24 ម៉ោង ដោយមិនគិតពីទីតាំងយកសំណាក (រូបភាពទី 1)។
ស្ថេរភាពនៃដំណោះស្រាយ NaHS (30 μM) ក្នុងទឹកផឹកក្នុងដបកណ្ដុរ/កណ្ដុរ។ បន្ទាប់ពីរៀបចំដំណោះស្រាយរួច គំរូត្រូវបានយកពីចុងដប និងផ្នែកខាងក្នុងដប។ ទិន្នន័យត្រូវបានបង្ហាញជាមធ្យម ± SD (n = 6/ក្រុម)។ * និង #, P < 0.05 បើប្រៀបធៀបទៅនឹងពេលវេលា 0។ រូបថតដបទឹកបង្ហាញពីចុងដប (ជាមួយនឹងការបើក) និងតួដប។ បរិមាណចុងដបគឺប្រហែល 740 μL។
កំហាប់ NaHS នៅក្នុងដំណោះស្រាយ 30 μM ដែលទើបរៀបចំថ្មីៗគឺ 30.3 ± 0.4 μM (ចន្លោះ៖ 28.7–31.9 μM, n = 12)។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ បន្ទាប់ពី 24 ម៉ោង កំហាប់ NaHS បានថយចុះដល់តម្លៃទាបជាង (មធ្យម៖ 3.0 ± 0.6 μM)។ ដូចបង្ហាញក្នុងរូបភាពទី 2 កំហាប់ NaHS ដែលកណ្តុរត្រូវបានប៉ះពាល់មិនថេរក្នុងអំឡុងពេលសិក្សានោះទេ។
ទម្ងន់ខ្លួនរបស់កណ្តុរញីបានកើនឡើងគួរឱ្យកត់សម្គាល់តាមពេលវេលា (ពី 205.2 ± 5.2 ក្រាម ដល់ 213.8 ± 7.0 ក្រាម នៅក្នុងក្រុមត្រួតពិនិត្យ និងពី 204.0 ± 8.6 ក្រាម ដល់ 211.8 ± 7.5 ក្រាម នៅក្នុងក្រុមដែលបានព្យាបាលដោយ NaHS); ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ការព្យាបាលដោយ NaHS មិនមានឥទ្ធិពលលើទម្ងន់ខ្លួនទេ (រូបភាពទី 3)។ ទម្ងន់ខ្លួនរបស់កណ្តុរឈ្មោលបានកើនឡើងគួរឱ្យកត់សម្គាល់តាមពេលវេលា (ពី 338.6 ± 8.3 ក្រាម ដល់ 352.4 ± 6.0 ក្រាម នៅក្នុងក្រុមត្រួតពិនិត្យ និងពី 352.4 ± 5.9 ក្រាម ដល់ 363.2 ± 4.3 ក្រាម នៅក្នុងក្រុមដែលបានព្យាបាលដោយ NaHS); ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ការព្យាបាលដោយ NaHS មិនមានឥទ្ធិពលលើទម្ងន់ខ្លួនទេ (រូបភាពទី 3)។
ការ​ប្រែប្រួល​ទម្ងន់​ខ្លួន​ចំពោះ​កណ្ដុរ​ញី និង​ឈ្មោល បន្ទាប់​ពី​ការ​ចាក់ NaHS (30 μM)។ ទិន្នន័យ​ត្រូវ​បាន​បង្ហាញ​ជា​មធ្យម ± SEM ហើយ​ត្រូវ​បាន​ប្រៀបធៀប​ដោយ​ប្រើ​ការ​វិភាគ​ចម្រុះ​ទ្វេ​ភាគី (ក្នុង​ចន្លោះ) នៃ​ភាព​ប្រែប្រួល​ជាមួយ​នឹង​ការ​ធ្វើ​តេស្ត Bonferroni post hoc។ n = 5 នៃ​ភេទ​នីមួយៗ​ក្នុង​ក្រុម​នីមួយៗ។
កំហាប់អ៊ុយរ៉េ និង creatine phosphate ក្នុងសេរ៉ូមគឺអាចប្រៀបធៀបបាននៅក្នុងសត្វកណ្តុរដែលគ្រប់គ្រង និងសត្វកណ្តុរដែលបានទទួលការព្យាបាលដោយ NaSH ពេញមួយការសិក្សា។ លើសពីនេះ ការព្យាបាលដោយ NaSH មិនបានប៉ះពាល់ដល់កំហាប់អ៊ុយរ៉េ និង creatinechrome ក្នុងសេរ៉ូមទេ (តារាងទី 1)។
កំហាប់ស៊ុលហ្វីតសរុបក្នុងសេរ៉ូមមូលដ្ឋានគឺអាចប្រៀបធៀបបានរវាងកណ្តុរឈ្មោលដែលបានព្យាបាលដោយ NaHS និងកណ្តុរញី (8.1 ± 0.5 μM ទល់នឹង 9.3 ± 0.2 μM) និងកណ្តុរដែលទទួលការព្យាបាលដោយ NaHS។ ការគ្រប់គ្រង NaHS រយៈពេល 14 ថ្ងៃមិនមានឥទ្ធិពលលើកម្រិតស៊ុលហ្វីតសរុបក្នុងសេរ៉ូមចំពោះកណ្តុរឈ្មោល ឬញីទេ (រូបភាពទី 4)។
ការ​ប្រែប្រួល​កំហាប់​ស៊ុលហ្វីត​សរុប​ក្នុង​សេរ៉ូម​ចំពោះ​កណ្ដុរ​ឈ្មោល និង​ញី បន្ទាប់​ពី​ការ​ចាក់ NaHS (30 μM)។ ទិន្នន័យ​ត្រូវ​បាន​បង្ហាញ​ជា​មធ្យម ± SEM ហើយ​ត្រូវ​បាន​ប្រៀបធៀប​ដោយ​ប្រើ​ការ​វិភាគ​ចម្រុះ​ទ្វេ​ភាគី (ក្នុង-ក្នុង) នៃ​ភាព​ប្រែប្រួល​ជាមួយ​នឹង​ការ​ធ្វើ​តេស្ត Bonferroni post hoc។ ភេទ​នីមួយៗ n = 5/ក្រុម។
សេចក្តីសន្និដ្ឋានសំខាន់នៃការសិក្សានេះគឺថា ទឹកផឹកដែលមានផ្ទុក NaHS គឺមិនស្ថិតស្ថេរទេ៖ មានតែប្រហែលមួយភាគបួននៃមាតិកាស៊ុលហ្វីតសរុបដំបូងប៉ុណ្ណោះដែលអាចរកឃើញ 24 ម៉ោងបន្ទាប់ពីការយកសំណាកពីចុង និងខាងក្នុងដបទឹកកណ្តុរ/កណ្ដុរ។ លើសពីនេះ កណ្តុរត្រូវបានប៉ះពាល់នឹងកំហាប់ NaHS មិនស្ថិតស្ថេរដោយសារតែការបាត់បង់ H2S នៅក្នុងដំណោះស្រាយ NaHS ហើយការបន្ថែម NaHS ទៅក្នុងទឹកផឹកមិនបានប៉ះពាល់ដល់ទម្ងន់រាងកាយ អ៊ុយរ៉េសេរ៉ូម និងក្រូមីញ៉ូម creatine ឬស៊ុលហ្វីតសេរ៉ូមសរុបនោះទេ។
នៅក្នុងការសិក្សានេះ អត្រានៃការបាត់បង់ H2S ពីដំណោះស្រាយ NaHS កំហាប់ 30 μM ដែលរៀបចំក្នុងទឹកផឹកគឺប្រហែល 3% ក្នុងមួយម៉ោង។ នៅក្នុងដំណោះស្រាយដែលមានសតិបណ្ដោះអាសន្ន (សូដ្យូមស៊ុលហ្វីត 100 μM ក្នុង 10 mM PBS, pH 7.4) កំហាប់ស៊ុលហ្វីតត្រូវបានរាយការណ៍ថាថយចុះ 7% តាមពេលវេលាក្នុងរយៈពេល 8 ម៉ោង11។ ពីមុនយើងធ្លាប់បានការពារការគ្រប់គ្រង NaHS ក្នុងពោះដោយរាយការណ៍ថាអត្រានៃការបាត់បង់ស៊ុលហ្វីតពីដំណោះស្រាយ NaHS កំហាប់ 54 μM ក្នុងទឹកផឹកគឺប្រហែល 2.3% ក្នុងមួយម៉ោង (4%/ម៉ោងក្នុងរយៈពេល 12 ម៉ោងដំបូង និង 1.4%/ម៉ោងក្នុងរយៈពេល 12 ម៉ោងចុងក្រោយបន្ទាប់ពីការរៀបចំ)8។ ការសិក្សាមុនៗ43 បានរកឃើញការបាត់បង់ H2S ជាប់លាប់ពីដំណោះស្រាយ NaHS ដែលភាគច្រើនដោយសារតែការហួត និងអុកស៊ីតកម្ម។ សូម្បីតែគ្មានការបន្ថែមពពុះក៏ដោយ ស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងដំណោះស្រាយស្តុកត្រូវបានបាត់បង់យ៉ាងឆាប់រហ័សដោយសារតែការហួត H2S11។ ការសិក្សាបានបង្ហាញថា ក្នុងអំឡុងពេលដំណើរការពនលាយ ដែលចំណាយពេលប្រហែល 30-60 វិនាទី ប្រហែល 5-10% នៃ H2S ត្រូវបានបាត់បង់ដោយសារតែការហួត6។ ដើម្បីការពារការហួត H2S ចេញពីដំណោះស្រាយ អ្នកស្រាវជ្រាវបានចាត់វិធានការជាច្រើន រួមទាំងការកូរដំណោះស្រាយថ្នមៗ12 គ្របដំណោះស្រាយស្តុកដោយខ្សែភាពយន្តប្លាស្ទិក6 និងកាត់បន្ថយការប៉ះពាល់នៃដំណោះស្រាយទៅនឹងខ្យល់ ចាប់តាំងពីអត្រានៃការហួត H2S អាស្រ័យលើចំណុចប្រទាក់ខ្យល់-រាវ។13 អុកស៊ីតកម្មដោយឯកឯងនៃ H2S កើតឡើងជាចម្បងដោយសារតែអ៊ីយ៉ុងលោហៈអន្តរកាល ជាពិសេសជាតិដែក ferric ដែលជាភាពមិនបរិសុទ្ធនៅក្នុងទឹក។13 អុកស៊ីតកម្មនៃ H2S បណ្តាលឱ្យមានការបង្កើតប៉ូលីស្យូមហ្វីត (អាតូមស្ពាន់ធ័រដែលភ្ជាប់ដោយចំណង covalent)11។ ដើម្បីជៀសវាងការកត់សុីរបស់វា ដំណោះស្រាយដែលមាន H2S ត្រូវបានរៀបចំក្នុងសារធាតុរំលាយដែលគ្មានអុកស៊ីសែន44,45 ហើយបន្ទាប់មកបន្សុទ្ធដោយអារហ្គុន ឬអាសូតរយៈពេល 20-30 នាទី ដើម្បីធានាបាននូវការដកអុកស៊ីសែន។11,12,37,44,45,46 អាស៊ីតឌីអេទីឡែនទ្រីអាមីនប៉ង់តាអាសេទិក (DTPA) គឺជាសារធាតុ chelator លោហៈ (10-4 M) ដែលការពារការកត់សុី H2S នៅក្នុងដំណោះស្រាយអេរ៉ូប៊ីក។ ក្នុងករណីដែលគ្មាន DTPA អត្រាការកត់សុី H2S គឺប្រហែល 50% ក្នុងរយៈពេលប្រហែល 3 ម៉ោងនៅសីតុណ្ហភាព 25°C37,47។ លើសពីនេះ ដោយសារការកត់សុីនៃ 1e-ស៊ុលហ្វីតត្រូវបានជំរុញដោយពន្លឺអ៊ុលត្រាវីយូឡេ ដំណោះស្រាយគួរតែត្រូវបានរក្សាទុកនៅលើទឹកកក និងការពារពីពន្លឺ11។
ដូចបង្ហាញក្នុងរូបភាពទី 5 NaHS បំបែកទៅជា Na+ និង HS-6 នៅពេលរំលាយក្នុងទឹក។ ការបំបែកនេះត្រូវបានកំណត់ដោយ pK1 នៃប្រតិកម្ម ដែលអាស្រ័យលើសីតុណ្ហភាព៖ pK1 = 3.122 + 1132/T ដែល T មានចាប់ពី 5 ដល់ 30°C ហើយត្រូវបានវាស់ជាដឺក្រេ Kelvin (K), K = °C + 273.1548។ HS- មាន pK2 ខ្ពស់ (pK2 = 19) ដូច្នេះនៅ pH < 96.49 S2- មិនត្រូវបានបង្កើតឡើង ឬត្រូវបានបង្កើតឡើងក្នុងបរិមាណតិចតួចទេ។ ផ្ទុយទៅវិញ HS- ដើរតួជាបាស និងទទួលយក H+ ពីម៉ូលេគុល H2O ហើយ H2O ដើរតួជាអាស៊ីត ហើយត្រូវបានបំប្លែងទៅជា H2S និង OH-។
ការបង្កើតឧស្ម័ន H2S រលាយក្នុងដំណោះស្រាយ NaHS (30 µM)។ aq ជាដំណោះស្រាយទឹក; g ជាឧស្ម័ន; l ជាសារធាតុរាវ។ ការគណនាទាំងអស់សន្មតថា pH ទឹក = 7.0 និងសីតុណ្ហភាពទឹក = 20 °C។ បង្កើតឡើងដោយ BioRender.com។
ទោះបីជាមានភស្តុតាងបង្ហាញថាដំណោះស្រាយ NaHS មិនស្ថិតស្ថេរក៏ដោយ ការសិក្សាលើសត្វជាច្រើនបានប្រើប្រាស់ដំណោះស្រាយ NaHS ក្នុងទឹកផឹកជាសមាសធាតុផ្តល់ H2S15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26 ជាមួយនឹងរយៈពេលអន្តរាគមន៍ចាប់ពី 1 ដល់ 21 សប្តាហ៍ (តារាងទី 2)។ ក្នុងអំឡុងពេលនៃការសិក្សាទាំងនេះ ដំណោះស្រាយ NaHS ត្រូវបានបន្តឡើងវិញរៀងរាល់ 12 ម៉ោង, 15, 17, 18, 24, 25 ម៉ោង ឬ 24 ម៉ោង, 19, 20, 21, 22, 23 ម៉ោង។ លទ្ធផលរបស់យើងបានបង្ហាញថា សត្វកណ្តុរត្រូវបានប៉ះពាល់នឹងកំហាប់ថ្នាំមិនស្ថិតស្ថេរដោយសារតែការបាត់បង់ H2S ពីដំណោះស្រាយ NaHS ហើយមាតិកា NaHS នៅក្នុងទឹកផឹករបស់សត្វកណ្តុរបានប្រែប្រួលគួរឱ្យកត់សម្គាល់ក្នុងរយៈពេល 12 ឬ 24 ម៉ោង (សូមមើលរូបភាពទី 2)។ ការសិក្សាពីរក្នុងចំណោមការសិក្សាទាំងនេះបានរាយការណ៍ថា កម្រិត H2S នៅក្នុងទឹកនៅតែមានស្ថេរភាពក្នុងរយៈពេល 24 ម៉ោង ឬមានតែការបាត់បង់ H2S 2–3% ប៉ុណ្ណោះដែលត្រូវបានគេសង្កេតឃើញក្នុងរយៈពេល 12 ម៉ោង ប៉ុន្តែពួកគេមិនបានផ្តល់ទិន្នន័យគាំទ្រ ឬព័ត៌មានលម្អិតអំពីការវាស់វែងនោះទេ។ ការសិក្សាពីរបានបង្ហាញថា ដបទឹកដែលមានអង្កត់ផ្ចិតតូចអាចកាត់បន្ថយការហួត H2S បាន15,19។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ លទ្ធផលរបស់យើងបានបង្ហាញថា វាអាចពន្យារពេលការបាត់បង់ H2S ពីដបទឹកត្រឹមតែ 2 ម៉ោងប៉ុណ្ណោះ ជាជាង 12–24 ម៉ោង។ ការសិក្សាទាំងពីរកត់សម្គាល់ថា យើងសន្មតថាកម្រិត NaHS នៅក្នុងទឹកផឹកមិនបានផ្លាស់ប្តូរទេ ព្រោះយើងមិនបានសង្កេតឃើញការផ្លាស់ប្តូរពណ៌នៅក្នុងទឹក។ ដូច្នេះ អុកស៊ីតកម្មនៃ H2S ដោយខ្យល់មិនមានសារៈសំខាន់ទេ19,20។ គួរឱ្យភ្ញាក់ផ្អើល វិធីសាស្ត្រប្រធានបទនេះវាយតម្លៃស្ថេរភាពនៃ NaHS នៅក្នុងទឹក ជាជាងការវាស់ស្ទង់ការផ្លាស់ប្តូរកំហាប់របស់វាតាមពេលវេលា។
ការបាត់បង់ H2S នៅក្នុងដំណោះស្រាយ NaHS គឺទាក់ទងទៅនឹង pH និងសីតុណ្ហភាព។ ដូចដែលបានកត់សម្គាល់នៅក្នុងការសិក្សារបស់យើង ការរំលាយ NaHS ក្នុងទឹកបណ្តាលឱ្យមានការបង្កើតដំណោះស្រាយអាល់កាឡាំង 50។ នៅពេលដែល NaHS ត្រូវបានរំលាយក្នុងទឹក ការបង្កើតឧស្ម័ន H2S ដែលរលាយអាស្រ័យលើតម្លៃ pH 6។ pH នៃដំណោះស្រាយកាន់តែទាប សមាមាត្រនៃ NaHS ដែលមានវត្តមានជាម៉ូលេគុលឧស្ម័ន H2S កាន់តែច្រើន និងស៊ុលហ្វីតកាន់តែច្រើនបាត់បង់ពីដំណោះស្រាយក្នុងទឹក 11។ គ្មានការសិក្សាណាមួយបានរាយការណ៍ពី pH នៃទឹកផឹកដែលប្រើជាសារធាតុរំលាយសម្រាប់ NaHS នោះទេ។ យោងតាមអនុសាសន៍របស់អង្គការសុខភាពពិភពលោក ដែលត្រូវបានអនុម័តដោយប្រទេសភាគច្រើន pH នៃទឹកផឹកគួរតែស្ថិតនៅក្នុងចន្លោះពី 6.5–8.551។ នៅក្នុងជួរ pH នេះ អត្រានៃអុកស៊ីតកម្មដោយឯកឯងនៃ H2S កើនឡើងប្រហែលដប់ដង 13។ ការរំលាយ NaHS ក្នុងទឹកក្នុងជួរ pH នេះនឹងបណ្តាលឱ្យមានកំហាប់ឧស្ម័ន H2S ដែលរលាយពី 1 ដល់ 22.5 μM ដែលសង្កត់ធ្ងន់លើសារៈសំខាន់នៃការត្រួតពិនិត្យ pH នៃទឹកមុនពេលរំលាយ NaHS។ លើសពីនេះ ជួរសីតុណ្ហភាពដែលបានរាយការណ៍នៅក្នុងការសិក្សាខាងលើ (១៨-២៦°C) នឹងបណ្តាលឱ្យមានការផ្លាស់ប្តូរកំហាប់ឧស្ម័ន H2S រលាយក្នុងដំណោះស្រាយប្រហែល ១០% ដោយសារការផ្លាស់ប្តូរសីតុណ្ហភាពផ្លាស់ប្តូរ pK1 ហើយការផ្លាស់ប្តូរតិចតួចនៅក្នុង pK1 អាចមានផលប៉ះពាល់យ៉ាងសំខាន់ទៅលើកំហាប់ឧស្ម័ន H2S រលាយ៤៨។ លើសពីនេះ រយៈពេលយូរនៃការសិក្សាមួយចំនួន (៥ ខែ)២២ ក្នុងអំឡុងពេលដែលការប្រែប្រួលសីតុណ្ហភាពធំត្រូវបានគេរំពឹងទុក ក៏ធ្វើឱ្យបញ្ហានេះកាន់តែធ្ងន់ធ្ងរឡើងផងដែរ។
ការសិក្សាទាំងអស់លើកលែងតែ one21 បានប្រើប្រាស់ដំណោះស្រាយ NaHS កំហាប់ 30 μM ក្នុងទឹកផឹក។ ដើម្បីពន្យល់ពីកម្រិតថ្នាំដែលបានប្រើ (ឧ. 30 μM) អ្នកនិពន្ធមួយចំនួនបានចង្អុលបង្ហាញថា NaHS នៅក្នុងដំណាក់កាលទឹកផលិតកំហាប់ឧស្ម័ន H2S ដូចគ្នាបេះបិទ ហើយជួរសរីរវិទ្យានៃ H2S គឺពី 10 ទៅ 100 μM ដូច្នេះកម្រិតថ្នាំនេះស្ថិតនៅក្នុងជួរសរីរវិទ្យា15,16។ អ្នកផ្សេងទៀតបានពន្យល់ថា NaHS 30 μM អាចរក្សាកម្រិត H2S ក្នុងប្លាស្មាក្នុងជួរសរីរវិទ្យា ពោលគឺ 5–300 μM19,20។ យើងពិចារណាលើកំហាប់ NaHS ក្នុងទឹក 30 μM (pH = 7.0, T = 20 °C) ដែលត្រូវបានប្រើក្នុងការសិក្សាមួយចំនួនដើម្បីសិក្សាពីផលប៉ះពាល់នៃ H2S។ យើងអាចគណនាបានថាកំហាប់ឧស្ម័ន H2S រលាយគឺ 14.7 μM ដែលស្មើនឹងប្រហែល 50% នៃកំហាប់ NaHS ដំបូង។ តម្លៃនេះគឺស្រដៀងគ្នាទៅនឹងតម្លៃដែលបានគណនាដោយអ្នកនិពន្ធផ្សេងទៀតក្រោមលក្ខខណ្ឌដូចគ្នា13,48។
នៅក្នុងការសិក្សារបស់យើង ការគ្រប់គ្រង NaHS មិនបានផ្លាស់ប្តូរទម្ងន់រាងកាយទេ។ លទ្ធផលនេះគឺស្របនឹងលទ្ធផលនៃការសិក្សាផ្សេងទៀតលើសត្វកណ្ដុរឈ្មោល 22,23 និងសត្វកណ្ដុរឈ្មោល 18; ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ការសិក្សាពីរបានរាយការណ៍ថា NaSH បានស្តារទម្ងន់រាងកាយដែលថយចុះចំពោះសត្វកណ្ដុរដែលត្រូវបានវះកាត់យកតម្រងនោមចេញ 24,26 ខណៈដែលការសិក្សាផ្សេងទៀតមិនបានរាយការណ៍ពីឥទ្ធិពលនៃការគ្រប់គ្រង NaSH លើទម្ងន់រាងកាយ 15,16,17,19,20,21,25។ លើសពីនេះ នៅក្នុងការសិក្សារបស់យើង ការគ្រប់គ្រង NaSH មិនបានប៉ះពាល់ដល់កម្រិតអ៊ុយរ៉េ និងក្រេទីនក្រូមីញ៉ូមក្នុងសេរ៉ូមទេ ដែលស្របនឹងលទ្ធផលនៃរបាយការណ៍មួយផ្សេងទៀត 25។
ការសិក្សាបានរកឃើញថា ការបន្ថែម NaHS ទៅក្នុងទឹកផឹករយៈពេល 2 សប្តាហ៍មិនបានប៉ះពាល់ដល់កំហាប់ស៊ុលហ្វីតសេរ៉ូមសរុបចំពោះសត្វកណ្តុរឈ្មោល និងញីនោះទេ។ ការរកឃើញនេះគឺស្របនឹងលទ្ធផលរបស់ Sen et al. (16): ការព្យាបាលរយៈពេល 8 សប្តាហ៍ជាមួយនឹង NaHS កំហាប់ 30 μM ក្នុងទឹកផឹកមិនបានប៉ះពាល់ដល់កម្រិតស៊ុលហ្វីតប្លាស្មាចំពោះសត្វកណ្តុរត្រួតពិនិត្យទេ។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ពួកគេបានរាយការណ៍ថា អន្តរាគមន៍នេះបានស្តារកម្រិត H2S ដែលថយចុះនៅក្នុងប្លាស្មារបស់សត្វកណ្តុរដែលត្រូវបានវះកាត់តម្រងនោម។ Li et al. (22) ក៏បានរាយការណ៍ផងដែរថា ការព្យាបាលជាមួយនឹង NaHS កំហាប់ 30 μM ក្នុងទឹកផឹករយៈពេល 5 ខែបានបង្កើនកម្រិតស៊ុលហ្វីតសេរីប្លាស្មាចំពោះសត្វកណ្តុរចាស់ប្រហែល 26%។ ការសិក្សាផ្សេងទៀតមិនបានរាយការណ៍ពីការផ្លាស់ប្តូរស៊ុលហ្វីតក្នុងឈាមបន្ទាប់ពីការបន្ថែម NaHS ទៅក្នុងទឹកផឹកនោះទេ។
ការសិក្សាចំនួនប្រាំពីរបានរាយការណ៍ថាបានប្រើប្រាស់ Sigma NaHS15,16,19,20,21,22,23 ប៉ុន្តែមិនបានផ្តល់ព័ត៌មានលម្អិតបន្ថែមអំពីទឹកដែលមានជាតិទឹកនោះទេ ហើយការសិក្សាចំនួនប្រាំមិនបាននិយាយអំពីប្រភពនៃ NaHS ដែលប្រើក្នុងវិធីសាស្ត្ររៀបចំរបស់ពួកគេ17,18,24,25,26។ NaHS គឺជាម៉ូលេគុលដែលមានជាតិទឹក ហើយមាតិកាទឹកដែលមានជាតិទឹករបស់វាអាចប្រែប្រួល ដែលប៉ះពាល់ដល់បរិមាណ NaHS ដែលត្រូវការដើម្បីរៀបចំដំណោះស្រាយនៃម៉ូឡារីតដែលបានផ្តល់ឱ្យ។ ឧទាហរណ៍ មាតិកា NaHS នៅក្នុងការសិក្សារបស់យើងគឺ NaHS•1.3 H2O។ ដូច្នេះ កំហាប់ NaHS ជាក់ស្តែងនៅក្នុងការសិក្សាទាំងនេះអាចទាបជាងអ្វីដែលបានរាយការណ៍។
«តើសមាសធាតុដែលមានអាយុកាលខ្លីបែបនេះអាចមានឥទ្ធិពលយូរអង្វែងយ៉ាងដូចម្តេច?» Pozgay និងក្រុម21 បានសួរសំណួរនេះនៅពេលវាយតម្លៃផលប៉ះពាល់នៃ NaHS លើជំងឺរលាកពោះវៀនធំចំពោះសត្វកណ្ដុរ។ ពួកគេសង្ឃឹមថាការសិក្សានាពេលអនាគតនឹងអាចឆ្លើយសំណួរនេះ ហើយស្មានថាដំណោះស្រាយ NaHS អាចមានផ្ទុកប៉ូលីស្យូលហ្វីតដែលមានស្ថេរភាពជាងមុន បន្ថែមពីលើ H2S និងឌីស៊ុលហ្វីត ដែលជាអ្នកសម្របសម្រួលឥទ្ធិពលនៃ NaHS21។ លទ្ធភាពមួយទៀតគឺថាកំហាប់ NaHS ទាបបំផុតដែលនៅសេសសល់ក្នុងដំណោះស្រាយក៏អាចមានឥទ្ធិពលល្អផងដែរ។ តាមពិត Olson និងក្រុមបានផ្តល់ភស្តុតាងថាកម្រិតមីក្រូម៉ូឡានៃ H2S នៅក្នុងឈាមមិនមែនជាសរីរវិទ្យាទេ ហើយគួរតែស្ថិតនៅក្នុងជួរណាណូម៉ូឡា ឬអវត្តមានទាំងស្រុង13។ H2S អាចធ្វើសកម្មភាពតាមរយៈស៊ុលហ្វាតប្រូតេអ៊ីន ដែលជាការកែប្រែក្រោយការបកប្រែដែលអាចបញ្ច្រាស់បាន ដែលប៉ះពាល់ដល់មុខងារ ស្ថេរភាព និងទីតាំងនៃប្រូតេអ៊ីនជាច្រើន52,53,54។ តាមពិតទៅ ក្រោមលក្ខខណ្ឌសរីរវិទ្យា ប្រហែល 10% ទៅ 25% នៃប្រូតេអ៊ីនថ្លើមជាច្រើនត្រូវបានស៊ុលហ្វីឡាត53។ ការសិក្សាទាំងពីរទទួលស្គាល់ការបំផ្លាញ NaHS យ៉ាងឆាប់រហ័ស19,23 ប៉ុន្តែគួរឱ្យភ្ញាក់ផ្អើលណាស់ដែលបាននិយាយថា "យើងបានគ្រប់គ្រងកំហាប់ NaHS នៅក្នុងទឹកផឹកដោយជំនួសវាជារៀងរាល់ថ្ងៃ"។23 ការសិក្សាមួយបានបញ្ជាក់ដោយចៃដន្យថា "NaHS គឺជាអ្នកផ្តល់ H2S ស្តង់ដារ ហើយត្រូវបានគេប្រើជាទូទៅនៅក្នុងការអនុវត្តគ្លីនិកដើម្បីជំនួស H2S ខ្លួនឯង"។18
ការពិភាក្សាខាងលើបង្ហាញថា NaHS បាត់បង់ពីដំណោះស្រាយតាមរយៈការហួត អុកស៊ីតកម្ម និង photolysis ដូច្នេះហើយទើបមានការណែនាំមួយចំនួនដើម្បីកាត់បន្ថយការបាត់បង់ H2S ពីដំណោះស្រាយ។ ទីមួយ ការហួត H2S អាស្រ័យលើចំណុចប្រទាក់ឧស្ម័ន-រាវ13 និង pH នៃដំណោះស្រាយ11; ដូច្នេះ ដើម្បីកាត់បន្ថយការបាត់បង់ហួត កញ្ចឹងកដបទឹកអាចត្រូវបានធ្វើឱ្យតូចតាមដែលអាចធ្វើទៅបានដូចដែលបានពិពណ៌នាពីមុន15,19 ហើយ pH នៃទឹកអាចត្រូវបានកែតម្រូវទៅដែនកំណត់ខាងលើដែលអាចទទួលយកបាន (ឧ. 6.5–8.551) ដើម្បីកាត់បន្ថយការបាត់បង់ហួត11។ ទីពីរ អុកស៊ីតកម្មដោយឯកឯងនៃ H2S កើតឡើងដោយសារតែផលប៉ះពាល់នៃអុកស៊ីសែន និងវត្តមាននៃអ៊ីយ៉ុងលោហៈអន្តរកាលនៅក្នុងទឹកផឹក13 ដូច្នេះការដកអុកស៊ីសែននៃទឹកផឹកជាមួយអារហ្គុន ឬអាសូត44,45 និងការប្រើប្រាស់សារធាតុ chelators លោហៈ37,47 អាចកាត់បន្ថយអុកស៊ីតកម្មនៃស៊ុលហ្វីត។ ទីបី ដើម្បីការពារការរលួយពន្លឺនៃ H2S ដបទឹកអាចត្រូវបានរុំដោយក្រដាសអាលុយមីញ៉ូម។ ការអនុវត្តនេះក៏អនុវត្តចំពោះសម្ភារៈដែលងាយនឹងពន្លឺដូចជា streptozotocin55។ ជាចុងក្រោយ អំបិលស៊ុលហ្វីតអសរីរាង្គ (NaHS, Na2S, និង CaS) អាចត្រូវបានគ្រប់គ្រងតាមរយៈបំពង់អាហារជាជាងរំលាយក្នុងទឹកផឹកដូចដែលបានរាយការណ៍ពីមុន56,57,58; ការសិក្សាបានបង្ហាញថា សូដ្យូមស៊ុលហ្វីតវិទ្យុសកម្មដែលត្រូវបានគ្រប់គ្រងតាមរយៈបំពង់អាហារដល់សត្វកណ្តុរត្រូវបានស្រូបយកបានយ៉ាងល្អ និងចែកចាយដល់ជាលិកាស្ទើរតែទាំងអស់59។ រហូតមកដល់បច្ចុប្បន្ន ការសិក្សាភាគច្រើនបានគ្រប់គ្រងអំបិលស៊ុលហ្វីតអសរីរាង្គតាមពោះ។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ ផ្លូវនេះកម្រត្រូវបានប្រើនៅក្នុងការកំណត់គ្លីនិក60។ ម្យ៉ាងវិញទៀត ផ្លូវតាមមាត់គឺជាផ្លូវគ្រប់គ្រងទូទៅ និងពេញចិត្តបំផុតចំពោះមនុស្ស61។ ដូច្នេះ យើងសូមណែនាំឱ្យវាយតម្លៃផលប៉ះពាល់នៃអ្នកផ្តល់ H2S ចំពោះសត្វកកេរដោយបំពង់អាហារតាមមាត់។
ដែនកំណត់មួយគឺថា យើងបានវាស់ស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងដំណោះស្រាយទឹក និងសេរ៉ូមដោយប្រើវិធីសាស្ត្រ MB។ វិធីសាស្ត្រសម្រាប់វាស់ស៊ុលហ្វីតរួមមាន ការវាស់អ៊ីយ៉ូត ស្ពិចត្រូហ្វូតូម៉ែត្រី វិធីសាស្ត្រអេឡិចត្រូគីមី (ប៉ូតង់ស្យូម៉ែត្រី អំពែរម៉ែត្រី វិធីសាស្ត្រគូឡូម៉ែត្រី និងវិធីសាស្ត្រអំពែរម៉ែត្រី) និងក្រូម៉ាតូក្រាហ្វី (ក្រូម៉ាតូក្រាហ្វីឧស្ម័ន និងក្រូម៉ាតូក្រាហ្វីរាវដំណើរការខ្ពស់) ដែលក្នុងនោះវិធីសាស្ត្រដែលប្រើជាទូទៅបំផុតគឺវិធីសាស្ត្រស្ពិចត្រូហ្វូតូម៉ែត្រី MB62។ ដែនកំណត់នៃវិធីសាស្ត្រ MB សម្រាប់វាស់ H2S នៅក្នុងគំរូជីវសាស្រ្តគឺថា វាវាស់សមាសធាតុដែលមានស្ពាន់ធ័រទាំងអស់ មិនមែន H2S សេរីទេ ព្រោះវាត្រូវបានអនុវត្តក្រោមលក្ខខណ្ឌអាស៊ីត ដែលបណ្តាលឱ្យមានការទាញយកស្ពាន់ធ័រពីប្រភពជីវសាស្រ្ត64។ ទោះជាយ៉ាងណាក៏ដោយ យោងតាមសមាគមសុខភាពសាធារណៈអាមេរិក MB គឺជាវិធីសាស្ត្រស្តង់ដារសម្រាប់វាស់ស៊ុលហ្វីតក្នុងទឹក65។ ដូច្នេះ ដែនកំណត់នេះមិនប៉ះពាល់ដល់លទ្ធផលចម្បងរបស់យើងលើអស្ថិរភាពនៃដំណោះស្រាយដែលមាន NaHS ទេ។ លើសពីនេះ នៅក្នុងការសិក្សារបស់យើង ការងើបឡើងវិញនៃការវាស់ស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងគំរូទឹក និងសេរ៉ូមដែលមាន NaHS គឺ 91% និង 93% រៀងគ្នា។ តម្លៃទាំងនេះស្របនឹងជួរដែលបានរាយការណ៍ពីមុន (77–92)66 ដែលបង្ហាញពីភាពជាក់លាក់នៃការវិភាគដែលអាចទទួលយកបាន42។ គួរកត់សម្គាល់ថាយើងបានប្រើកណ្តុរឈ្មោល និងញីទាំងបួនស្របតាមគោលការណ៍ណែនាំរបស់វិទ្យាស្ថានសុខភាពជាតិ (NIH) ដើម្បីជៀសវាងការពឹងផ្អែកខ្លាំងពេកលើការសិក្សាលើសត្វឈ្មោលតែនៅក្នុងការសិក្សាមុនព្យាបាល67 និងដើម្បីរួមបញ្ចូលទាំងកណ្តុរឈ្មោល និងញីគ្រប់ពេលដែលអាចធ្វើទៅបាន68។ ចំណុចនេះត្រូវបានសង្កត់ធ្ងន់ដោយអ្នកផ្សេងទៀត69,70,71។
សរុបមក លទ្ធផលនៃការសិក្សានេះបង្ហាញថា ដំណោះស្រាយ NaHS ដែលរៀបចំពីទឹកស្អាតមិនអាចប្រើដើម្បីបង្កើត H2S បានទេ ដោយសារតែភាពមិនស្ថិតស្ថេររបស់វា។ វិធីនៃការគ្រប់គ្រងនេះនឹងធ្វើឱ្យសត្វប្រឈមនឹងកម្រិត NaHS មិនស្ថិតស្ថេរ និងទាបជាងការរំពឹងទុក។ ដូច្នេះ ការរកឃើញនេះអាចនឹងមិនអនុវត្តចំពោះមនុស្សទេ។
សំណុំទិន្នន័យដែលបានប្រើ និង/ឬវិភាគក្នុងអំឡុងពេលសិក្សាបច្ចុប្បន្នអាចរកបានពីអ្នកនិពន្ធដែលត្រូវគ្នា តាមការស្នើសុំសមហេតុផល។
Szabo, K. ពេលវេលានៃការស្រាវជ្រាវអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីត (H2S): ពីជាតិពុលបរិស្ថានរហូតដល់អន្តរការីជីវសាស្រ្ត។ ជីវគីមីវិទ្យា និងឱសថសាស្ត្រ 149, 5–19។ https://doi.org/10.1016/j.bcp.2017.09.010 (2018)។
អាបេ, ខេ. និង គីមូរ៉ា, អេច. តួនាទីដែលអាចកើតមាននៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតជាសារធាតុបញ្ជូនសរសៃប្រសាទខាងក្នុង។ ទិនានុប្បវត្តិវិទ្យាសាស្ត្រសរសៃប្រសាទ, ១៦, ១០៦៦–១០៧១។ https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.16-03-01066.1996 (១៩៩៦)។
Chirino, G., Szabo, C. និង Papapetropoulos, A. តួនាទីសរីរវិទ្យានៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងកោសិកា ជាលិកា និងសរីរាង្គរបស់ថនិកសត្វ។ ការពិនិត្យឡើងវិញនៅក្នុងសរីរវិទ្យា និងជីវវិទ្យាម៉ូលេគុល 103, 31–276។ https://doi.org/10.1152/physrev.00028.2021 (2023)។
Dillon, KM, Carrazzone, RJ, Matson, JB, និង Kashfi, K. ការសន្យាវិវត្តនៃប្រព័ន្ធចែកចាយកោសិកាសម្រាប់អុកស៊ីដអាសូត និងអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីត៖ យុគសម័យថ្មីនៃឱសថផ្ទាល់ខ្លួន។ ជីវគីមីវិទ្យា និងឱសថសាស្ត្រ 176, 113931។ https://doi.org/10.1016/j.bcp.2020.113931 (2020)។
Sun, X., et al. ការប្រើប្រាស់រយៈពេលវែងនៃសារធាតុបរិច្ចាគអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតដែលបញ្ចេញយឺតអាចការពារការខូចខាតដល់សាច់ដុំបេះដូងដោយសារកង្វះឈាមរត់/ការបញ្ចូលឈាមឡើងវិញ។ របាយការណ៍វិទ្យាសាស្ត្រលេខ 7, 3541. https://doi.org/10.1038/s41598-017-03941-0 (2017)។
Sitdikova, GF, Fuchs, R., Kainz, W., Weiger, TM និង Hermann, A. ការបញ្ចេញផូស្វ័រឆានែល BK គ្រប់គ្រងភាពរសើបនៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីត (H2S)។ ទស្សនាវដ្ដី Frontiers in Physiology 5, 431. https://doi.org/10.3389/fphys.2014.00431 (2014)។
Sitdikova, GF, Weiger, TM និង Hermann, A. អ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតបង្កើនសកម្មភាពឆានែលប៉ូតាស្យូម (BK) ដែលបានធ្វើឱ្យសកម្មដោយកាល់ស្យូមនៅក្នុងកោសិកាដុំសាច់ក្រពេញភីតូរីសកណ្តុរ។ Archit. Pfluegers. 459, 389–397. https://doi.org/10.1007/s00424-009-0737-0 (2010).
Jeddy, S., et al. អ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតបង្កើនប្រសិទ្ធភាពការពារនៃនីទ្រីតប្រឆាំងនឹងការខូចខាត myocardial ischemia-reperfusion ចំពោះសត្វកណ្តុរទឹកនោមផ្អែមប្រភេទទី 2។ អុកស៊ីដអាសូត 124, 15–23។ https://doi.org/10.1016/j.niox.2022.04.004 (2022)។
Corvino, A., et al. និន្នាការនៃគីមីវិទ្យាអ្នកបរិច្ចាគ H2S និងផលប៉ះពាល់របស់វាទៅលើជំងឺសរសៃឈាមបេះដូង។ សារធាតុប្រឆាំងអុកស៊ីតកម្ម 10, 429. https://doi.org/10.3390/antiox10030429 (2021).
DeLeon, ER, Stoy, GF, និង Olson, KR (2012)។ ការខាតបង់អកម្មនៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងការពិសោធន៍ជីវសាស្ត្រ។ ជីវគីមីវិភាគ 421, 203–207។ https://doi.org/10.1016/j.ab.2011.10.016 (2012)។
Nagy, P., et al. ទិដ្ឋភាពគីមីនៃការវាស់វែងអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងគំរូសរីរវិទ្យា។ Biochimica et Biophysical Acta 1840, 876–891. https://doi.org/10.1016/j.bbagen.2013.05.037 (2014).
Kline, LL.D. ការកំណត់វិសាលគមនៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីតនៅក្នុងទឹកធម្មជាតិ។ Limnol. Oceanogr. 14, 454–458. https://doi.org/10.4319/lo.1969.14.3.0454 (1969).
Olson, KR (2012)។ ការបណ្តុះបណ្តាលជាក់ស្តែងក្នុងគីមីវិទ្យា និងជីវវិទ្យានៃអ៊ីដ្រូសែនស៊ុលហ្វីត។ “សារធាតុប្រឆាំងអុកស៊ីតកម្ម”។ សញ្ញា Redox។ 17, 32–44។ https://doi.org/10.1089/ars.2011.4401 (2012)។